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肝纤维化模型实验动物模型

1.诱导方法：1)成年雄性小鼠40%CCL4，皮下注射或灌胃5mL/kg。每三天/次，连续8周。成年雄性大鼠皮下注射60％CCl4（3ml/kg），每周2次，共9周。2)成年雄性大鼠1％二甲基亚硝胺DMN（10mg/kg），1次/d，2次/周，连续4周。3)成年雄性大鼠腹腔注射硫代乙酰胺（100mg/kg）隔日腹腔注射1次，连续13周。4)成年大鼠，灌胃给白酒7g/kg体重，每日晨1次，连续24周。

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双转基因实验动物模型。利用基因打靶技术培育出的APP/PS-1双转基因鼠，在3月龄时出现学习记忆障碍、Aβ增多和形成SP，6月龄时即可出现严重的学习记忆力衰退、认知功能障碍，神经元变性和突触丢失等多种AD病理特性。对AD 病理特征Aβ和SP方面的研究主要采用APP/PS-1双转基因鼠。但其外源性基因表达不够稳定性、动物价格高。

APP/PS1/Tau 三转因模型。APP/PS1/Tau 三转基因小鼠模型是由APPSwe、PS1、TauP301L基因系突变建立的，首先在皮质区和出现Aβ异常沉积、SP 和NFTs 形成，随后海马区也逐渐出现 Aβ沉积、SP和NFTs，以及突触丢失、神经元变性AD临床病理表现。APP/PS1/Tau三转基因小鼠模型是目前与AD 病理特征接近的转基因动物模型，但其外源性基因表达稳定性较差、造模较困难且造价高。 甘肃制作实验动物模型外包英瀚斯生物 专业承接各类实验动物模型！

大鼠烫伤模型

(1)复制方法：按30mg/kg体重的剂量经腹腔注射3％戊巴比妥钠麻醉大鼠，根据体重腹部备皮，然后固定于实验台上。将大鼠移近加热自来水的烧杯，将纱布条浸入热水中，待水温恒定于99℃时，取出纱布，立即平铺于待烫部位，以纱布接触大鼠皮肤后计时。

(2)模型特点：大体观察：致伤3s大鼠局部皮肤发红、轻微水肿。愈合后毛发生长良好，有少量红褐色素沉着，皮肤轻微挛缩，表皮光滑。致伤10s大鼠局部皮肤发白、水肿。愈合后毛发生长良好，皮肤瘢痕形成，表面粗糙不平。光镜观察：致伤3s大鼠表皮层次尚清楚，细胞明显肿胀、变性，层次结构尚清楚，细胞核结构不清。表皮内有水疱形成，真皮水肿、间质疏松，胶原纤维断裂，嗜酸性染色性能减退，呈嗜双色性。致伤10s大鼠表皮细胞部分脱落，结构不清，明显变性、坏死，部分细胞已溶解。表皮内有水疱形成，真皮层间质疏松、充血，胶原纤维融合成片，嗜酸性染色性能减退，呈嗜双色性，大部分皮脂腺、汗腺、***被破坏，结构不清，真皮深部可见残余***。皮下组织血管扩张、充血、水肿明显，结构未破坏。上述结果表明，致伤3s大鼠为浅Ⅱ度烫伤，致伤10s大鼠为深Ⅱ度烫伤。

心血管疾病实验动物模型，英瀚斯生物小编为您介绍：1）动脉性粥样硬化动物模型常选用兔、猪、大鼠、鸡、鸽、猴和狗等。常用的方法有高胆固醇、高脂肪饲料法，免疫学法、儿茶酚胺药物注射法等。兔的优点为敏感性高，容易造成模型，时间短，缺点为它的脂质代谢与人类不同，兔表现为血源性泡沫细胞增多，解剖分布以胸动脉为主，小动脉常有病变。猪与人类相似，结合胸X-线照射，可引起冠状动脉痉挛。2）心肌缺血和心肌梗死电刺激法，雄兔麻醉后，用弱、强电交替刺激（0.8-1.6mA及4-6mA）右侧下丘脑背侧核，即可形成心肌缺血模型；药物法，给大鼠或兔注射异丙肾上腺素，狗静脉注射麦角新碱复制冠状动脉痉挛；冠状动脉阻断法，用大鼠或狗麻醉，在冠状动脉套上压迫环，复制心肌缺血和心梗模型。3）高血ya疾病动物模型可采用肾包扎法及肾动脉缩窄法复制继发性高血ya，用噪声刺激复制神经性高血ya模型。有推荐的实验动物模型供应商吗？

新一代AD（阿尔兹海默症）实验动物模型。尽管APP-Tg小鼠在过去十几年中范围广的被用于开发新的AD医疗策略，但这种小鼠的基因表型和AD患者的还是不同。而且上述的转基因动物模型在Aβ的生成、tau蛋白的过度磷酸化、神经纤维缠结等病理特征上和AD患者的差异也很大，无法理想地模拟AD患者。为了克服这些不希望出现的问题，研究人员构建了带有Swedish（KM670/671NL）、Beyreuther/Iberian（I716F）和Arctic突变等APP基因敲入（APP-KI）小鼠。APP-KI小鼠在没有过度表达APP的情况下生成Aβ42。随着年龄的增长，APP-KI小鼠大脑皮层和海马区出现过多的Aβ沉积。另一方面，与其他AD模型一样，该模型没有tau病理、NFTs、神经退行性变或大量神经元丢失可用于研究临床前AD。由于基因组编辑的新的进展，尤其是CRISPR/Cas技术，未来对转基因动物模型进行改良也值得期待。关于实验动物模型，你想知道的都在这里。湖南承接实验动物模型外包

大鼠实验动物模型都有哪些？青海好的实验动物模型实验

肝炎实验动物模型

6.1自身免疫性肝病动物模型应用成年豚鼠，在无菌条件下，先使豚鼠肝素化，而后用生理盐水经门脉进行肝脏灌流，剪断动、静脉以驱除肝内存血。除去胆囊、胆管及其他组织。将肝剪成小块，再以生理盐水浸洗直至无血色。取湿重10g的肝组织，加100ml生理盐水，在组织匀浆器中以8000转/分转4min制成10％的肝悬液。按1：1的比例加入弗氏佐剂，用小注射器往返抽注制成乳剂。成年豚鼠用上述乳剂腹腔注射2ml及4个足垫皮内注射0.1ml。每周一次，免疫1个月后，肝脏内可发生水肿样变性、嗜酸性坏死、肉芽肿样病灶、胆管上皮增生及淋巴细胞和嗜伊红细胞浸润。

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6.2转基因乙肝模型【操作步骤】构建人乙型肝炎病毒(HBV)全基因或部分基因质粒，通过转基因技术将乙型肝炎病毒插入到小鼠基因组上，形成能产生乙型肝炎的小鼠品系。【结果分析】乙型肝炎病毒转基因小鼠，有病毒复制，可用于研究HBV基因结构和功能、基因表达的调控、HBV的复制等。乙型肝炎病毒转基因小鼠会发生免疫逃避，不产生和人类乙型肝炎相近的病理表现。目前，中国医学科学院、***医学科学院、上海复旦大学和广州空军医院拥有乙型肝炎病毒转基因小鼠。 青海好的实验动物模型实验